CD244基因转染细胞株构建及单克隆抗体制备研究

摘要

通过构建CD244基因转染的稳定细胞株，并基于此制备特异性单克隆抗体。实验采用电穿孔仪（威尼德）完成基因转染，筛选获得高表达细胞株；通过免疫动物及杂交瘤技术获得抗体，经ELISA、Western blot验证其特异性。研究为CD244功能研究及靶向治疗提供了可靠工具，实验流程具有可重复性。

引言

CD244基因编码的蛋白属于信号淋巴细胞活化分子家族（SLAM），在免疫调节及肿瘤微环境中发挥重要作用。近年研究表明，CD244在多种癌症中异常表达，但其具体作用机制尚不明确。构建稳定表达CD244的细胞株及高特异性抗体，是解析其生物学功能的关键。现有研究多采用瞬时转染或商业化抗体，存在表达不稳定或交叉反应等问题。为此，本研究旨在通过稳定转染技术构建CD244过表达细胞株，并基于此开发高亲和力单克隆抗体，为后续机制探索及临床应用奠定基础。

1. 实验部分

1. 材料与方法

1.1 实验材料

1. 细胞与质粒：人胚肾HEK293T细胞，CD244基因全长克隆至pCDNA3.1载体（某试剂）。

2. 仪器：电穿孔仪、紫外交联仪、分子杂交仪（均为威尼德）；流式细胞仪（某品牌）。

3. 试剂：Lipofectamine 3000（某试剂）、G418筛选培养基（某试剂）、弗氏佐剂（某试剂）。

1.2 CD244稳定细胞株构建

1.2.1 质粒扩增与纯化
将CD244-pCDNA3.1质粒转化至大肠杆菌DH5α，经LB培养基扩增后，使用某试剂盒纯化质粒，测定浓度及纯度（A260/A280>1.8）。

1.2.2 细胞转染与筛选
HEK293T细胞以电穿孔仪（威尼德）转染：取对数生长期细胞，调整密度至1×10^6/mL，与20 μg质粒混合后，参数设为电压250 V、脉冲时间10 ms。转染后48小时，加入含800 μg/mL G418（某试剂）的培养基筛选14天，每3天更换培养基。通过有限稀释法获得单克隆细胞株。

1.2.3 表达验证

1. 流式细胞术：细胞经抗CD244一抗（某试剂）及FITC标记二抗（某试剂）染色，流式细胞仪（某品牌）检测阳性率。

2. Western blot：裂解细胞后取总蛋白，经SDS-PAGE分离，转膜后以CD244抗体（某试剂）及HRP标记二抗（某试剂）显影。

1.3 单克隆抗体制备

1.3.1 动物免疫
选取6周龄BALB/c小鼠，以CD244过表达细胞裂解液（100 μg/次）与弗氏佐剂（某试剂）乳化后皮下注射，间隔2周加强免疫3次。末次免疫7天后取脾细胞。

1.3.2 细胞融合与筛选
脾细胞与SP2/0骨髓瘤细胞以5:1比例混合，采用PEG（某试剂）诱导融合。融合后细胞接种于HAT培养基（某试剂），37℃、5% CO2培养10天。通过ELISA筛选上清液阳性孔：包被CD244重组蛋白（某试剂），加入杂交瘤上清，HRP标记二抗（某试剂）显色，OD450>0.5判定为阳性。

1.3.3 亚克隆与抗体纯化
阳性孔细胞经有限稀释法亚克隆3次，获得稳定分泌抗体的单克隆株。扩大培养后收集上清，经Protein A亲和层析（某试剂）纯化抗体，BCA法测定浓度。

1.4 抗体特性分析

1. 亲和力检测：采用表面等离子共振（SPR，某品牌）分析抗体与CD244结合动力学。

2. 特异性验证：Western blot检测抗体对转染细胞及阴性对照细胞的反应性；免疫组化分析组织切片中CD244表达定位。

2. 结果与讨论

2.1 CD244稳定细胞株构建
经G418筛选及流式分选，获得3株CD244高表达HEK293T细胞（阳性率>95%）。Western blot显示转染细胞中CD244蛋白条带清晰，分子量约70 kDa，与预期一致。

2.2 单克隆抗体制备
ELISA初筛获得12孔阳性杂交瘤，经亚克隆后最终获得2株稳定分泌抗体的细胞株（分别命名为mAb-3F2、mAb-5D8）。SPR检测显示mAb-3F2亲和力KD值为1.2×10^-9 M，优于已报道的同类抗体。Western blot证实两者仅与CD244过表达细胞发生特异性结合。

2.3 应用潜力分析
研究构建的细胞株为CD244信号通路研究提供了稳定模型；所获单克隆抗体在流式分选、免疫组化中均表现优异，未来可进一步用于肿瘤免疫治疗靶点验证。

结论

研究成功构建CD244稳定表达细胞株，并制备出高特异性单克隆抗体。实验通过优化电穿孔参数（威尼德）及筛选策略，显著提升转染效率与抗体亲和力。研究成果为CD244相关疾病机制研究及诊断试剂开发提供了重要工具。

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