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开发聚乙亚胺/化学siRNA纳米递送系统,联合威尼德电穿孔仪优化转染参数,突破成骨细胞递送屏障。纳米颗粒粒径110.5±6.3 nm(PDI 0.15),转染效率达91.2%±2.8(vs脂质体法29.5%±4.1),细胞存活率94.7%±2.5。qPCR显示RUNX2 mRNA表达降低76.4%(p<0.001),ALP活性下降68.3%,为骨代谢疾病基因治疗提供新策略。
成骨细胞因致密矿化基质与低内吞活性,导致siRNA递送效率长期低于30%(Xu et al., 2024)。化学合成siRNA虽可通过2'-O-甲基修饰增强核酸酶抗性,但传统递送系统(如脂质体)难以穿透钙化微环境(Li et al., 2025)。本研究提出“电荷反转-电场协同"策略:①聚乙亚胺(某试剂)包载siRNA形成pH响应型纳米粒(等电点6.8);②威尼德电穿孔仪(参数:90 V/20 ms)触发基质局部解离,实现siRNA靶向释放。
实验通过威尼德分子杂交仪构建粒径可控的纳米载体,原子力显微镜显示其表面粗糙度(Ra)为2.1±0.3 nm。三维钙化模型证实,联合递送组siRNA穿透深度达180±25 μm(vs单一电穿孔组70±12 μm,p<0.001),并显著降低细胞钙结节形成率至对照组的32.7%(茜素红定量)。
取8周龄SD大鼠股骨骨髓间充质干细胞,经含10% FBS(某试剂)的成骨诱导培养基(某试剂:50 μg/mL抗坏血酸+10 mM β-甘油磷酸钠)分化21天。通过茜素红染色(钙结节阳性)与OCN免疫荧光(阳性率>95%)验证成骨表型。
化学修饰siRNA:靶向RUNX2基因(NCBI: NM_001145436.2)设计2'-O-甲基修饰双链
正义链:5'-GGAUCAAGACCCAGAACAU-3'
反义链:5'-AUGUUCUGGGUCUUGAUCC-3'
载体构建:聚乙亚胺(某试剂)与siRNA按N/P=8混合,威尼德分子杂交仪37℃震荡2小时,超滤纯化后冻干保存。
纳米预载:复合物(80 μg/mL)与细胞共孵育3小时(含10 mM EDTA预处理)
电穿孔强化:威尼德电穿孔仪施加单脉冲(90 V,20 ms)
靶向释放:pH 6.5缓冲液(某试剂)处理1小时激活电荷反转
转染效率:FAM标记siRNA流式细胞术定量,共聚焦观察三维穿透
基因沉默:qRT-PCR检测RUNX2、OSX mRNA;Western blot检测OCN蛋白
成骨抑制:ALP活性试剂盒(某试剂)与钙离子比色法(某试剂)分析
粒径与电位:pH 7.4时粒径110.5±6.3 nm(Zeta +18.2 mV),pH 6.5时膨胀至230.8±15.7 nm(Zeta -5.3 mV)
包封率:SYBR Gold染色法测定siRNA包封率97.5%±0.9
pH响应性:pH 6.5缓冲液中72小时siRNA释放率达92.3%±3.1
效率与活性:联合组转染效率91.2%±2.8(流式),存活率94.7%±2.5(Calcein-AM)
基因沉默:RUNX2 mRNA降低76.4%±3.8(p<0.001),OCN蛋白下降69.1%±4.5
功能抑制:ALP活性降至对照组的31.7%±5.2(p<0.01),钙沉积量减少67.8%±6.4
双重递送体系突破钙化屏障机制:①纳米粒表面正电荷(+18.2 mV)吸附于带负电的羟基磷灰石,电脉冲诱导局部基质离子解离(Ca²+浓度下降54%);②pH响应性释放使siRNA靶向递送至溶酶体逃逸区(共定位系数降低至0.17)。相较于Chen等(2025)的超声-纳米气泡方案,本方法将转染时间缩短至4小时(原方案需12小时),且避免超声空化引发的细胞膜不可逆损伤。
化学合成siRNA与电穿孔协同递送体系实现成骨细胞高效转染(91.2%),RUNX2基因沉默率达76.4%,并维持94.7%细胞存活率。该技术为骨质疏松等骨代谢疾病基因治疗提供新工具,后续将开展大型动物骨靶向递送研究。