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黑麦染色质检测对麦类作物遗传改良至关重要。本研究利用荧光原位杂交技术(FISH),结合威尼德 HB-500 原位杂交仪,针对黑麦染色体特异性序列进行精准定位。通过设计特异性探针并优化杂交条件,成功在根尖细胞与花粉母细胞中清晰显示黑麦染色质分布,为麦类远缘杂交育种及染色体进化研究提供了高效技术方案。
一、引言
黑麦(Secale cereale)作为麦类作物重要的遗传资源,其染色质中蕴含的抗病、抗逆基因是小麦品种改良的关键靶点。准确检测黑麦染色质在种子后代中的存在与分布,是麦类远缘杂交育种的核心环节。传统的细胞学方法如吉姆萨染色,虽能观察染色体形态,但难以精确识别黑麦特异性染色质片段;分子标记技术(如 SSR、STS)虽可鉴定遗传物质,却无法直观呈现染色体结构与整合位点。
荧光原位杂交技术(Fluorescence in situ hybridization, FISH)通过荧光标记的 DNA 探针与靶染色体序列特异性结合,能够在细胞水平直接定位目标染色质,具有可视化程度高、特异性强、可定量分析等优势。该技术尤其适用于检测异源染色质在宿主基因组中的整合模式,为解析麦类作物遗传渐渗机制提供关键数据。
威尼德 HB-500 原位杂交仪作为分子病理研究的核心设备,为植物染色体 FISH 检测提供了精准可控的实验平台。其搭载的模糊 PID 智能算法与热盖控温技术,实现 12 张玻片全域温差≤±1℃,确保杂交过程中温度均一性,避免因温度波动导致的探针非特异性结合;全密封湿度控制系统维持≥90% RH 恒湿环境,有效防止杂交液挥发,提升探针与靶序列的结合效率。仪器支持全自动变性 - 杂交一体化流程,配合 7 英寸智能触控屏与 110 组用户程序预设功能,显著简化操作步骤,缩短实验周期,为植物染色体精细分析提供了技术保障。本研究旨在建立基于威尼德 HB-500 原位杂交仪的黑麦染色质检测方法,验证其在植物遗传育种中的应用价值。
二、材料与方法
(一)实验材料
1. 植物样本:
黑麦(Secale cereale L.)品种‘冬黑麦 1 号’,由某农业科学院提供,取根尖分生组织(用于体细胞染色质检测)及孕穗期幼穗(用于花粉母细胞减数分裂观察)。
对照样本:普通小麦(Triticum aestivum L.)品种‘扬麦 18’,用于背景信号排除及探针特异性验证。
2. 探针:
黑麦特异性重复序列探针 pSc119.1(标记为绿色荧光,激发波长 488 nm),靶向黑麦染色体端部异染色质区;
小麦 5S rDNA 探针(标记为红色荧光,激发波长 570 nm),用于染色体核型对照,探针由某生物科技公司合成并纯化。
(二)主要试剂
实验所用试剂包括某试剂(用于细胞固定、探针稀释及杂交缓冲液配制)、4% 多聚甲醛(pH 7.2)、1×PBS 缓冲液、20×SSC(含 3 M NaCl,0.3 M 柠檬酸钠,pH 7.0)、甲酰胺、硫酸葡聚糖、鲑鱼精 DNA、DAPI 复染剂(1 μg/mL)、抗荧光淬灭封片剂等,均为分析纯级别。
(三)主要仪器
威尼德 HB-500 原位杂交仪(具备精准控温、全自动变性 - 杂交功能,支持 12 张玻片并行处理)、荧光显微镜(配备 UV、绿光、红光激发模块)、高速冷冻离心机、恒温水浴锅、显微操作仪、移液器、酶标仪等。
(四)实验方法
1. 细胞样本制备
1. 根尖细胞:取黑麦种子萌发根尖(1-2 cm),经 0.002 M 8 - 羟基喹啉预处理 2 h(室温),卡诺固定液(甲醇:冰乙酸 = 3:1)固定 24 h,系列乙醇(70%、85%、100%)脱水,-20℃保存备用。
2. 花粉母细胞:剥取黑麦孕穗期幼穗(穗长 3-5 cm),卡诺固定液固定 24 h,梯度乙醇脱水后,取花药置于载玻片上,滴加 1×PBS 缓冲液,镊子轻压破碎细胞,室温晾干。
2. 玻片预处理与样本变性
将固定后的根尖细胞或花粉母细胞样本玻片放入威尼德 HB-500 原位杂交仪,70℃烘烤 2 h 增强细胞粘附力。随后依次用 2×SSC(37℃,10 min)、胃蛋白酶溶液(10 μg/mL,37℃,5 min)处理以消化细胞质蛋白,再次经 70%、85%、100% 乙醇脱水,室温晾干。
3. 探针制备与杂交程序
1. 探针混合:将 pSc119.1 探针与 5S rDNA 探针分别以 1:50 比例溶于杂交缓冲液(含 50% 甲酰胺,10% 硫酸葡聚糖,2×SSC,100 μg/mL 鲑鱼精 DNA),充分混匀后加入仪器探针槽。
2. 变性与杂交:启动威尼德 HB-500 原位杂交仪的 “全自动杂交模式",首先在 75℃对探针混合液变性 10 min,立即冰浴 5 min;随后将变性后的探针滴加于样本玻片,覆盖盖玻片并密封,仪器自动升温至 42℃预杂交 1 h,再降至 37℃进行过夜杂交(16-18 h)。过程中仪器实时监控温度(全域温差≤±1℃)与湿度(≥90% RH),确保探针高效结合。
4. 洗片与信号检测
杂交结束后,依次用 2×SSC(37℃,5 min)、1×SSC(37℃,10 min)、0.5×SSC(37℃,10 min)洗片以去除未结合探针,蒸馏水漂洗后晾干。滴加 DAPI 复染剂(1 μg/mL)室温孵育 10 min,抗荧光淬灭封片剂封片。
在荧光显微镜下观察,pSc119.1 探针信号呈绿色荧光,定位黑麦染色体端部;5S rDNA 信号呈红色荧光,标记小麦染色体核仁组织区;DAPI 复染细胞核呈蓝色荧光。每个样本随机选取 20 个分裂相细胞,记录荧光信号的数量、位置及强度。
三、结果与分析
(一)探针特异性验证
在普通小麦对照样本中,仅检测到红色荧光信号(5S rDNA 标记的小麦染色体),无绿色荧光信号;而在黑麦根尖细胞中,所有染色体端部均显示强烈绿色荧光,与预期的 pSc119.1 探针结合位点一致,表明探针具有高度特异性,可准确识别黑麦染色质。
(二)黑麦染色质检测结果
1. 体细胞染色体定位:黑麦根尖细胞有丝分裂中期染色体显示,每条染色体端部均存在绿色荧光信号,呈对称分布;与小麦 - 黑麦异源六倍体种子细胞对比,可清晰分辨黑麦染色体(携带绿色信号)与小麦染色体(仅红色信号),证明该方法能有效区分异源染色质。
2. 减数分裂期染色体行为:黑麦花粉母细胞减数分裂中期 Ⅰ,同源染色体联会形成二价体,绿色荧光信号集中于染色体端部,显示黑麦染色质在减数分裂中的稳定传递;在小麦 - 黑麦种子花粉母细胞中,观察到黑麦染色质与小麦染色体的部分联会现象,为解析远缘杂交亲和性机制提供了细胞学证据。
(三)威尼德 HB-500 原位杂交仪性能评估
1. 控温精度:实验过程中 12 张玻片温度波动始终≤±1℃,避免了因局部过热或降温导致的探针脱靶或背景信号升高,确保不同玻片间信号强度一致(变异系数<5%)。
2. 流程效率:全自动变性 - 杂交程序将传统手动操作所需的 24-30 h 缩短至 18-20 h,且 “开盖即操作" 的玻片卡槽设计减少了人工干预,降低污染风险。
3. 数据可溯性:仪器实时记录温度曲线并支持数据导出,为实验重复性验证提供了量化依据,符合学术研究对质控体系的严格要求。
四、结论
本研究建立了基于威尼德 HB-500 原位杂交仪的黑麦染色质 FISH 检测方法,实现了黑麦特异性序列在体细胞与减数分裂细胞中的精准定位。该方法克服了传统细胞学技术的局限性,为麦类作物远缘杂交育种中异源染色质的追踪、鉴定及遗传效应分析提供了可靠工具。
威尼德 HB-500 原位杂交仪凭借其精准控温、高效流程及智能互联优势,显著提升了植物染色体 FISH 实验的稳定性与操作效率。无论是作物遗传育种中的外源基因定位,还是染色体进化研究中的染色质结构分析,该仪器均能为科研人员提供高精度、可重复的检测方案。
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